Дальневосточный государственный медицинский университет Поиск | Личный кабинет | Авторизация
Поиск статьи по названию
Поиск книги по названию
Каталог рубрик
в коллекциюДобавить в коллекцию

ПРОБЛЕМЫ МОНИТОРИНГА УСТОЙЧИВОСТИ МИКРООРГАНИЗМОВ К ДЕЗИНФИЦИРУЮЩИМ СРЕДСТВАМ В МЕДИЦИНСКИХ ОРГАНИЗАЦИЯХ


Аннотация:

В статье излагаются проблемы микробиологического мониторинга устойчивости микроорганизмов к дезинфицирующим средствам, связанные, главным образом, с отсутствием единой для РФ организационной системы мониторинга, недостаточном отражении данного вопроса в нормативных документах. Как пример, приведены результаты мониторинга в одной из медицинских организаций г. Москвы. Из 70 штаммов микроорганизмов, выделенных в отделениях различного профиля с объектов внешней среды и патологических локусов, 27 оказались резистентными. Дан анализ резистентности в зависимости от вида микроорганизма, химической природы дезинфицирующего средства и т.д. Обоснована необходимость совершенствования нормативной базы по микробиологическому мониторингу резистентности микроорганизмов, циркулирующих в МО к дезинфицирующим средствам. Эффективное осуществление дезинфекционных мероприятий в медицинских организациях (МО) играет большую, а нередко решающую роль в профилактике инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи (ИСМП). Вместе с тем, формирование и распространение в МО микроорганизмов, резистентных к используемым химическим дезинфицирующим средствам существенно снижает эффект проведения дезинфекционных мероприятий, что является частой причиной высокого уровня ИСМП. Проблема усугубляется появлением устойчивости к антибиотикам у штаммов, устойчивых к ДС (перекрестная устойчивость), что усугубляет течение основного заболевания у пациентов, способствует быстрой колонизации устойчивыми штаммами клинических отделений. В ряде документов нормативного и рекомендательного характера имеется указание на необходимость проведения в медицинских организациях микробиологического мониторинга с целью выявления устойчивых к ДС штаммов. Вместе с тем полноценное выполнение этих требований сдерживается отсутствием единой для Российской Федерации организационной системы проведения микробиологического мониторинга устойчивости к ДС, отражающей объекты исследований, объем в зависимости от эпидситуации; правильную оценку микробиологического пейзажа отделений МО и рациональный отбор штаммов для исследований; необходимость усиленного контроля контаминации определенных объектов внутрибольничной среды, играющих основную роль в передаче ИСМП или определенным видом микроорганизма, циркулирующим во внешней среде; производственный контроль за мониторингом устойчивости ДС. Отсутствует система быстрого и адекватного реагирования при обнаружении резистентных микроорганизмов. Поэтому на практике мониторинг устойчивости микроорганизмов к ДС проводится в недостаточном объеме и некачественно, либо не проводится совсем, а наличие в обороте не эффективных и недостаточно эффективных ДС усугубляет ситуацию, способствуя формированию устойчивости микроорганизмов к этим ДС. Таким образом, проблема устойчивости микроорганизмов к ДС и контроль этого процесса актуальны и настоятельно требуют всестороннего анализа и поиска путей их практического решения. С целью выявления проблем, возникающих при проведении мониторинга резистентности к ДС микроорганизмов, циркулирующих в одной из медицинских организаций г. Москвы, были проведены исследования выделенных в этой МО штаммов микроорганизмов и 3-х используемых ДС. Средство № 1 представляло собой прозрачную жидкость желтоватого цвета, с характерным запахом, в качестве действующих веществ содержит смесь четвертичных аммониевых соединений (ЧАС) - алкилдиметилбенизаммоний хлорида и дидецилдиметиламмоний хлорида, суммарно 14,7%, N,N-бис(3-аминопропил)додециламин — 6%, полигексаметиленгуанидин гидрохлорид (ПГМГ) - 4%. Как указано в инструкции по применению средства, оно обладает антимикробной активностью в отношении грамотрицательных и грамположительных микроорганизмов (включая возбудителей туберкулеза), вирулицидной, фунгицидной, спорацидной активностью. Минимальная бактерицидная концентрация при обработке поверхностей в помещениях — 0,01 % (по препарату) — 45 минут. Фактически, медицинская организация для обработки поверхностей использует режим 0,5 % (по препарату) - 10 минут, что соответствует режиму, обеспечивающему гибель бактерий, вирусов и грибов рода Candida. Средство №2 представляло собой бесцветную прозрачную жидкость, со слабым специфическим запахом, в качестве действующих веществ содержит перекись водорода 20%, алкилдиметилбензиламмоний хлорид 15% и сополимер водорастворимых солей полигексаметиленгуанидина 5,0%. Согласно Инструкции, средство обладает антимикробной активностью в отношении грамотрицательных и грамположительных бактерий (включая возбудителей туберкулеза), возбудителей особо опасных инфекций, анаэробных и внутрибольничных инфекций, вирулицидной, фунгицидной, спороцидной активностью, овоцидным и ларвицидным действием. Минимальная бактерицидная концентрация при обработке поверхностей в помещениях 0,05% (по препарату) - 60 минут. Медицинская организация для обработки поверхностей использует режим 1,0% (по препарату) — 15 минут, что соответствует режиму, обеспечивающему гибель грибов рода Candida. Средство №3 представляло собой гранулированный порошок белого цвета с включениями в виде окрашенных гранул голубого или зеленого цвета, хорошо растворимый в воде. В состав средства в качестве действующего вещества входит перкарбонат натрия 55%, а также активатор и вспомогательные компоненты. Массовая доля активного кислорода 9—11%. Согласно Инструкции, средство обладает активностью в отношении грамотрицательных и грамположительных бактерий (включая возбудитель туберкулеза), вирулицидной, фугицидной, спороцидной активностью. Минимальная бактерицидная концентрация для обработки поверхностей в помещениях 0,1 % (по препарату) — 60 минут. Медицинская организация для обработки поверхностей использует режим 1 % (по препарату) — 15 минут, что соответствует режиму, обеспечивающему гибель грибов рода Candida. При поступлении средств в ФБУН «НИИДезинфектологии» Роспотребнадзора был проведен химический контроль, все три образца средства соответствовали нормативной документации по содержанию действующих веществ (ДВ) и значениям рН. После входного химического контроля был проведен анализ инструкций по применению средств и оценка чувствительности к воздействию минимальных бактерицидных режимов музейного штамма P. aeruginosa АТСС 27853, для того чтобы выявить заведомо не эффективные средства. Параллельно проводили исследования по оценке режимов, применяемых в медицинской организации, значительно превышающих минимально эффективные бактерицидные (от 5 до 50 раз). Все исследования по оценке чувствительности микроорганизмов проведены в соответствии с МУ 3.1.5. 3439-17. Результаты исследований эффективности средств в отношении музейного штамма синегнойной палочки P. aeruginosa АТСС 27853 приведены в табл. 1. Как видно из табл. 1 средство № 1 в минимальном бактерицидном режиме не обладает достаточной активностью в отношении P. aeruginosa АТСС 27853, что свидетельствует, что в Инструкции представлен заниженный бактерицидный режим. Применяемый в МО режим в 50 раз выше по концентрации, и он обеспечивает гибель бактерий, однако нет гарантии, что этот режим эффективен в отношении вирусов и грибов рода Candida, на которые он рассчитан. Кроме того, анализ инструкции по применению средства № 1, показал, что в ней имеются рекомендации в отношении возбудителей туберкулеза в явно заниженной концентрации (минимальный режим для обработки поверхностей — 0,25 % по препарату, соответствует 0,0015% по третичному амину, содержащемуся в препарате в количестве 6% — единственному компоненту в рецептуре, обладающему туберкулоцидным действием), а также в отношении спор бацилл, что не соответствует химической природе действующего вещества средства. Средства № 2 и № 3 в минимальных бактерицидных концентрациях обладают активностью в отношении P. aeruginosa АТСС 27853. В инструкциях по применению отсутствуют заведомо неэффективные режимы. Однако в Инструкции по применению средства № 2 содержатся недостоверные сведения о наличии туберкулоцидного и спороцидного действия, которыми действующие вещества, входящие в его состав, не обладают. Следующим этапом была оценка чувствительности к 3-м ДС 70 штаммов микроорганизмов, выделенных в МО (рис. 1). Преобладала грамотрицательная микрофлора. Все микроорганизмы обладали устойчивостью к антибиотикам. Проверены режимы, используемые в МО для обработки поверхностей, которые, в соответствии с Инструкцией по применению средства, должны обеспечить гибель бактерий, вирусов и грибов рода Candida. Микроорганизмы были выделены в различных отделениях МО, в основном, в отделении анестезиологии и реанимации (ОАиР) — 36 штаммов микроорганизмов, и неврологическом отделении (НО) — 8 штаммов микроорганизмов (рис. 2). Штаммы были выделены с объектов внешней среды - 20 штаммов (29 %), и из патологических локусов пациентов стационара 50 штаммов (71 %). При изучении чувствительности микроорганизмов к ДС, применяемым в МО, установлено, что резистентные штаммы представлены следующими видами: A. baumannii — 10 штаммов, из них 5 из внешней среды; К. pneumonia - 8 штаммов, из них 2 из внешней среды; P. aeruginosa - 6 штаммов, из них 2 из внешней среды; Е. соИ - 2 штамма, S. aureus - 1 штамм (рис. 3). Большинство резистентных штаммов были выделены в ОАиР — 11 штаммов (рис. 4). Резистентные штаммы были выделены с объектов внешней среды — 9 штаммов (33 %) и из патологических локусов пациентов — 18 штаммов (67%) (рис. 5). Как видно из табл. 2, среди К. pneumonia наибольшее количество штаммов были устойчивы к средству № 1 — 6 шт., к средствам № 2 и № 3 устойчивы по 1 штамму. Штаммы А. Ьаитапnii имели наибольшую устойчивость к средству №3 — 5 штаммов, к средству № 1 - устойчивы 3 штамма, к средству № 2 — 2 штамма. У P. aeruginosa выявлена устойчивость ко всем трем средствам по 2 штамма. Е. coli — установлена устойчивость к средству № 2 и № 3 - по 1 штамму. Штамм S. aureus был устойчив к средству № 3. По группам ДС, к которым показана резистентность, установлено, что 11 штаммов были устойчивы к действию КПАВ (средство 1), 10 штаммов устойчивы к действию активного кислорода (средство 3), 6 штаммов имеют устойчивость к ЧАС в комплексе с активным кислородом (средство 2) (рис. 6). Выводы. Инструкции по применению средств 1 и 2 содержат режимы, не обеспечивающие заявленный уровень дезинфекции. Из 70 штаммов микроорганизмов, выделенных из объектов внешней среды и от пациентов, 27 (38,7%) являются резистентными к применяемым ДС. Резистентные штаммы выделены практически во всех отделениях МО, однако наибольшее количество резистентных штаммов выделены в отделении анестезиологии и реанимации. Штаммы К. pneumonia, A. baumannii, P. aeruginosa устойчивы ко всем применяемым ДС. Наиболее распространена устойчивость у штаммов A. baumannii (10 из12), P. aeruginosa (6 из 13). Идентичность резистентных штаммов, выделенных от пациентов и во внешней среде, свидетельствует о перекрестном обсеменении и приводит к распространению резистентных штаммов среди пациентов. По результатам исследования для МО даны рекомендации, касающиеся исключения неэффективных дезинфекционных средств и выбора эффективных, организации мониторинга микробного пейзажа, включая выявление резистентных штаммов. Также даны рекомендации, касающиеся эпидемиологического расследования случаев гнойно-септических заболеваний пациентов, особенно в отделении анестезиологии и реанимации. В целом, анализ данных об осуществлении дезинфекционных мероприятий в медицинских организациях, как важнейшей меры по предупреждению ИСМП, показал настоятельную необходимость реализации системных мероприятий в этой сфере. Необходима разработка и утверждение методических указаний по вопросам мониторинга за формированием устойчивых к дезинфицирующим средствам микроорганизмов и реагирования в случае их выявления. В методических указаниях следует отразить вопросы планирования исследований, оценки результатов микробиологического мониторинга, подготовки и реализации мероприятий в случае выявления резистентных штаммов микроорганизмов, другие вопросы. Требуется внесение соответствующих дополнений и уточнений в СаНПиН 2.1.3. 2630-10 «Санитарно-эпидемиологические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность». Актуальной является проблема внедрения в деятельность клинических лабораторий МУ 3.1.5. 3439-17 «Оценка чувствительности к ДС микроорганизмов, циркулирующих в медицинских организациях». Также необходима систематическая профессиональная подготовка врачей-эпидемиологов, бактериологов, помощников эпидемиологов, заместителей главврачей по эпидвопросам, главных медсестер и других специалистов, занимающихся вопросами организации и проведения дезинфекционных мероприятий.

Авторы:

Шестопалов Н.В.
Федорова Л.С.
Серов А.А.
Гололобова Т.В.
Рулева А.И.
Сорокина Л.А.

Издание: Дезинфекционное дело
Год издания: 2018
Объем: 5с.
Дополнительная информация: 2018.-N 2.-С.14-18. Библ. 4 назв.
Просмотров: 88

Рубрики
Ключевые слова
aeruginosa
aureus
baumannii
candida
coli
адекватность
активатор
активность
активные
акты
алкил
алкилдиметилбензиламмоний
амины
аммоний
анализ
анаэробная
анестезиология
антибиотик
антимикробные
базы
бактерии
бактерий
бактериология
бациллы
белые
большая
быстрого
быстрый
вещество
вирулицидный
вирус
включениями
внедрение
внешний
внутрибольничная
вода
водорастворимые
водород
возбудители
воздействие
вопрос
врачи
вспомогательные
входной
выбор
вывод
выделение
выполнение
высокий
выявление
гарантии
гибель
гидрохлорид
главврач
главные
гнойн
голубой
грамотрицательные
грамположительные
гранулы
грибами
групп
данные
данных
дезинфекции
дезинфекционные
дезинфицирующие
действие
действия
действующие
деятельности
додециламин
документация
документы
доля
другого
единственная
единый
желтая
жидкостей
заболевания
зависимости
запахи
зеленого
значению
игровая
идентичность
изучение
инструкции
инфекцией
иска
исследование
качества
кислород
клиническая
ключ
количество
колонизация
комплекс
компонент
контаминация
контроль
концентрация
лаборатории
лекарственная
локус
массовая
медицинская
медсестер
мероприятия
меры
методические
микробиологическая
микробная
микроорганизмов
микроорганизмы
микрофлора
минимально
минута
мониторинг
москва
музей
наибольшая
наличия
настой
натрий
неврологическая
недостаточное
некачественное
необходимости
нормативная
обнаружение
оборот
обработка
образ
образцов
обсеменение
объект
объем
одного
оказание
опасные
определенного
организации
организационная
основной
особо
особый
осуществление
отбор
отделение
отношение
отсутствие
оценка
палочка
параллель
патологическая
пациент
передача
перекиси
перекрестная
планирование
поверхности
подготовка
поиск
полигексаметиленгуанидин
полноценн
помещений
помощи
помощник
порошок
после
поступление
правильная
практика
практическая
превышающей
предупреждение
препараты
применение
природа
причина
проблема
проведение
проведения
прозрачная
производственные
профессиональная
профилактика
профиль
процесс
путей
различный
разработка
распространение
расследование
растворимый
рационального
реагирование
реализация
реанимация
режим
резистентность
резистентный
результата
рекомендации
рецептура
решения
родами
роль
роспотребнадзор
российская
ряда
свидетельства
связанные
синегнойная
систем
систематические
системная
ситуации
след
слова
случаев
смесь
совершенствование
содержание
содержащая
соединение
сои
солевая
соответствие
соответствующие
сополимер
состав
специалистов
специфическая
споры
способ
среда
средств
средства
статьи
стационар
суммарный
сфера
течения
требования
третичная
три
туберкулез
туберкулоид
указ
указания
уровень
уровни
усиленная
устойчивое
устойчивости
устойчивость
утверждение
фактически
федерации
формирование
фунгицидной
характер
характерного
химические
химический
хлорид
хороший
цвета
целом
целью
циркулирующие
часы
четвертичная
чувствительность
штамм
штаммы
эпидемии
эпидемиологическая
этап
эффект
эффективность
эффективный
Ваш уровень доступа: Посетитель (IP-адрес: 44.220.255.141)
Яндекс.Метрика